分子生物学实验教案2010

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分子生物学实验教案

实验3 琼脂糖凝胶电泳检测DNA

【时间安排】:3学时 【实验类型】:基本训练 【目的要求】:

1、 了解:琼脂糖凝胶电泳检测DNA的原理; 2、 掌握:琼脂糖凝胶电泳检测DNA的方法; 3、 熟悉:琼脂糖凝胶电泳检测DNA的操作过程。

【实验原理】:

琼脂糖凝胶电泳是检测DNA的常用方法。琼脂糖主要从海洋植物琼脂中提取,是一种聚合链线性分子,实验室中常用两种琼脂糖,即常熔点的和低熔点的,它们都是琼脂的衍生物,具有很高的聚合强度和很低的电内渗,都是良好的电泳支持介质。

核酸分子是两性解离分子,在pH3.5时,碱基上的氨基基团解离,而三个磷酸基团中只有第一个磷酸解离,整个核酸分子带正电荷,在电场中向负极泳动;在pH值为8.0~8.3时,碱基几乎不解离,磷酸全部解离,核酸分子带负电荷,向正极移动。不同大小和构象的核酸分子的电荷密度大致相同,在自由泳动时,各核酸分子的迁移率区别很小,难以分开。DNA分子在琼脂糖凝胶中泳动时有电荷效应和分子筛效应。由于DNA分子的电荷密度大致相同,即相同数量的链DNA几乎具有等量净电荷,它们以同样速度向正极移动,因此,在一定电场强度下,DNA分子的移动速率取决于分子筛效应,即DNA分子本身的大小和构型。具有不同的相对分子质量的DNA片断泳动速度不一样,可进行分离。其迁移速度与相对分子质量的对数值成反比关系。

凝胶不仅可以分离不同相对分子质量的DNA,也可以分离相对质量相同,但构型不同的DNA分子。如抽提质粒DNA过程中,由于各种因素的影响,使提取的质粒可能存在三种构型:①超螺旋的共价闭环状质粒(CC);②解旋开环质粒DNA(OC);③线状质粒DNA(L)。电泳中,泳动最快的是CC,其次为L,最慢的为OC。

DNA在琼脂糖中的电泳迁移速率主要取决于:样品DNA分子大小、DNA分子构象、琼脂糖浓度、电场电压、缓冲液、温度等。

加入EB,并将已知浓度的标准样品和已知分子量大小的标准DNA片断(即marker)作琼脂糖凝胶电泳对照,可分别检测样品的浓度和分子量大小。

【仪器与试剂】:

主要仪器:微波炉、稳压电泳仪、电泳槽、紫外灯箱、三角瓶、量筒、微量移液器、离心管、记号笔等;

主要试剂:实验1提取的质粒样品、溴化乙锭、溴酚兰、电极缓冲液、琼脂糖、上样缓冲液、标准DNA marker。

【重要实验步骤和教学设计】: 1、 准备好制胶板,封边防漏。

2、 根据所需浓度称取一定量的琼脂糖,加入适量的0.5×或1×TBE或其它电泳缓冲液,微

波炉加热或沸水裕使琼脂糖溶解。

3、 等凝胶温度降到55℃~60℃时,加入溴化乙锭(EB)至终浓度为0.5μL/ml,摇匀。

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4、 将琼脂糖倒入制胶板中,凝胶厚度一般为0.3~0.5cm,迅速插上梳子,检查有无气泡。 5、 凝胶充分凝固后,小心取出梳子,并撤除两端封边挡板。

6、 将凝胶放置于电泳槽中,加入相应的电泳缓冲液,使液面略高于胶面。

7、 在DNA样品中加入1/6的上样缓冲液,混匀后,稍离心,然后用移液器将DNA样品加

入样品孔中。 8、 接通电源,选择适当电压和电泳方向,使DNA样品由负极向正极电泳。 9、 当指示剂接近凝胶末端时,切断电源,停止电泳。 10、取出凝胶,在紫外灯下观察,摄像。

【实验注意事项】:

1、 制作琼脂糖凝胶时,要戴手套,不要滴洒在台面或地面,千万不要触碰溴化乙锭(EB),

因为它是癌变的强烈诱变剂,用后用水彻底冲洗干净;

2、 加样时不要慌,不要抖动,以免碰裂加样孔导致各个加样孔中的DNA相互渗透 3、 观看电泳结果时不要拥挤,认真辨认是否提取到了目的质粒DNA。

【思考题】:

1、 DNA电泳方向与pH值有什么关系?在一定电场强度下,DNA分子的移动速率取决于

分子筛效应?

2、 DNA在琼脂糖中的电泳迁移速率与样品DNA分子大小、DNA分子构象、琼脂糖浓度、

电场电压、缓冲液、温度等有什么样的关系?

【实验后记】:

实验4 PCR扩增获取目的基因

【时间安排】:3 学时 【实验类型】:设计 【目的要求】:

1、 了解:PCR反应的基本原理和引物设计的一般要求; 2、 掌握:通过PCR反应获取目的基因的实验技术;

3、 熟悉:PCR反应体系的加样顺序和PCR仪的正确使用方法。

【实验原理】:

获取目的基因是非常艰巨的工作,通常要求:靶基因表型明确;单个靶基因编码优良性状或疾病基因;靶基因是一对等位基因控制的显性基因;容易获得目的基因的突变体和重组子等。但通过设计合理的基因克隆策略还是可以分离获得目的基因的。使用的方法通常有:PCR扩增法、核酸探针筛选法、免疫反应筛选法、酶活性筛选法、差示杂交法、DNA标签法、染色体巡查法(chromosome walking)、图位克隆法、酵母双杂交法等等。

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聚合酶链式反应(polymerase chain reaction)简称PCR技术,是在模板DNA、引物和4种脱氧核糖核苷酸存在的条件下,依赖于DNA聚合酶的酶促反应。分三步:①变性,通过加热使DNA双螺旋的氢键断裂,双链解离形成单链DNA;②退火,当温度降低时由于模板分子结构较引物要复杂得多,而且反应体系中引物DNA量大大多于模板DNA,使引物和其互补的模板在局部形成杂交链,而模板DNA双链之间互补的机会较少;③延伸,在DNA聚合酶和4种脱氧核糖核苷三磷酸底物及Mg存在的条件下,5′→3′的聚合酶催化以引物为起始点DNA链延伸反应。以上三个步骤为一个循环,每一循环产物可作为下一个循环的模板,几十个循环后,介于两个引物之间的特异性DNA片段得到大量复制,可达2

6~7

×10拷贝。

引物的设计在PCR反应中极为重要,应遵循几条原则:①碱基组成,G﹢C含量应在40~60%,4种碱基要在引物中分配均匀,如没有多聚嘌呤或多聚嘧啶的序列,并且没有二核苷酸重复序列;②长度,18~25个核苷酸,上下游引物的长度差别不能大于3bp;③不能有大于3bp的反向重复序列或自身互补序列的存在,这种序列可能成发夹结构,如果是这种结构在PCR条件下稳定,它会非常有效地组织寡聚核苷酸和靶DNA之间的复性;④一个引物的3′末端都不能和其他任何引物互补,否则会形成引物二聚体。精心设计引物,应用热启动PCR或降落PCR或特制的DNA聚合酶都可以避免二聚体形成;⑤解链温度(Tm):计算出两个引物的Tm值相差不能大于5℃,扩增产物的Tm值与引物的Tm值相差不能大于10℃,这些特性保证了扩增产物在每个PCR循环可有效地变性;⑥3′末端,每个因为的3′末端碱基应尽可能为G或C,但又不推荐使用3′末端有……NNCG或……NNGC序列的引物,因为末端GC碱基高的自由能可以村级发夹结构的形成,还可能产生二聚体;⑦向引物5′末端添加限制性酶切位点,噬菌体启动子等序列,因为位于DNA分子5′末端的限制性酶切位点的切割效率比较低,所以,引物应当超出限制性内切酶识别位点2-3个核苷酸,即至少包含有2-3个保护碱基;⑧从cDNA或基因文库中PCR扩增目的基因时,应注意引导位点的设置和简并PCR引物的设计。

本实验已知目的基因是在质粒pUCATPH中的抗潮霉素基因,见图1

2+

图1 抗潮霉素基因(黑色部分)

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分子生物学实验教案 已知抗潮霉素基因序列为:

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要求通过PCR技术将目的基因扩增出来,关键是引物设计,在设计引物时要考虑到后续实验中的DNA酶切、连接和转化等,所用的克隆载体为pBSKS,见图2

图2

【仪器与试剂】:

主要仪器:微量移液器、PCR仪、离心机、微波炉、电泳槽、电泳仪、紫外灯箱等。

主要试剂:模板DNA、质粒DNA、引物、Tag酶及其他PCR反应体系的成分、DNA标准Marker、进口琼脂糖、TE、上样缓冲液、乙醇等。

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