感受态细胞的制备及转化

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37℃ 孵育1h;

6、取100μl菌液,接种于含抗生素的LB平皿(也可以把菌液2000 rpm离心5 min,收集细菌,用预热LB重悬细菌,接种含抗生素的LB平皿上),37℃ 孵育过夜。

7、剩余的感受态,可做阴性对照。 三)注意事项

1、本方法的关键是选用的细菌必须处于对数生长期,实验操作必须在低温下进行。

2、PEG 和MgCl2二者均可沉淀质粒DNA,且PEG 有使细胞壁具有穿透性, 允许DNA 进入细菌体内的生物学功能;这些可能是优于CaCl2 法的原因。

3、培养基PH值。pH值在6.8-7.2之间较好。保证菌摇好后,pH值不低于6.0。pH值在6.5以上,表示菌体的代谢为有氧代谢,生长状态良好。

4、培养基离子浓度。经验证明,当培养基中存在一定量的Mg2+离子时,该方法制得的感受态要相对较高。使用20mmol/L MgCl2做为培养基的添加物,在感受态收获之前20-30分钟加入,会收到很好的效果。

5、培养温度。文献及经验证明,较低的温度培养有利于感受态的形成(一般18℃,一般的感受态,用室温即可),有利于获得较高转化效率的感受态。

6、感受态保存。文献报道,在保存感受态时,DMSO要比甘油的效果要

好,它会使感受态的效率增加。浓度不要超过7%。液氮速冻也会使感受态的效率提高,可用液氮速冻感受态12小时,然后保存于超低温冰箱内;也可在液氮中长时间保存而不降低效率。

7、热休克时间。有实验证明热休克时间30s能取得最好效果,而温度40-50℃均可,转化效率下降不明显。

8、转化质粒建议不要超过10ng,否则容易导致效率下降。 9、试剂使用国产分析纯即可,一定要过滤除菌,不能高压灭菌。

四、 结果判定

转化后的菌液,分3个梯度DNA量,转化三个LB平皿,计算平均转化效率。

转化效率1×106 cfu/μg DNA可满足普通的亚克隆实验;1×107 cfu/μg DNA用于作更复杂的亚克隆、有限量的DNA的转化、T-克隆实验;大于1×10 8 cfu/μg DNA可用于构建文库和突变要求用的转化。

转化效率计算公式:

转化效率=产生菌落的总数/铺板DNA的总量(cfu/μg DNA)

这是最常用的方法,即计算每微克DNA经转化后可以得到的阳性克隆菌落的数目(clone formation unit, cfu)。但实际上,由于用于测定转染效率的质粒(一般要求超螺旋质粒)的分子量不同,每微克DNA所代表的DNA分子数也会有差异,因此一般情况上,转化效率测定使用的都是pBR322或pUC19等小分子量的质粒。

使用一个具体的例子来说明转化效率的计算方法:假设取0.1ng

pUC19质粒转入100μl待测的感受态细菌中,按常规转化步骤进行冰浴和热击,加入900μl SOC培养基继续培养(此时DNA浓度为0.1ng DNA/ml,这里也可使用LB培养基,但最后得到的克隆菌的数目可能会降低)。然后再用SOC培养基进行1:10稀释(此时DNA浓度变为0.01ng DNA/ml),分别取100μl(含总量为0.001ng的DNA)涂布至两个平行的平板中。如果最后产生的菌落数为200 个(两个平板菌落的平均数),则转化效率为:

200 cfu/0.001ng = 2×108 cfu/μg(注:2×108 cfu/μg的转化效率,大约相当于可以将千分之一的pUC19质粒分子成功转入感受态细菌中。)

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