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?（1〕刚果红染色液。刚果红1g，蒸馏水100ml； ?（2〕Harris苏木素染色液。
淀粉样物质染色（介绍刚果红染色） ?2〕染色步骤：
?（1〕苏木素染色液浸染2分钟； ?（2〕0.5%盐酸乙醇分化数秒钟； ?（3〕流水洗，蒸馏水洗2次； ?（4〕刚果红染色液中25分钟； ?（5〕无水乙醇迅速脱水2次； ?（6〕二甲苯透明，中性树胶封固。
?结果：淀粉样物质呈红色，细胞核呈蓝色。
第八章 细胞学检查技术
?细胞学检查是肿瘤病理诊断和普查较常用方法。
?特点：简便、快速、无创伤，可反复多次检查。
?对于肿瘤，只做初步诊断，确诊依据活体组织学检查。 常规细胞病理学技术 一、取材、涂片制备
痰涂片、胸水、腹水及尿液制片 二、固定
三、染色 (巴氏染色)
常用固定液
（1）等量95%乙醇和乙醚混合液 （2）氯仿酒精固定液 （3）95%酒精固定液 （4）福尔马林固定液
细胞学研究，固定液选择要根据实验要求条件而定，如用细胞涂片作原位PCR，固定液要选用多聚甲醛。
巴氏染色步骤
1．标本95％酒精固定3-5分钟 2．Harris苏木素液5-10分钟
3．水（蒸馏水或自来水）漂洗2-3次 4．1％盐酸水溶液（或1％盐酸酒精液） 浸1-3次
5．自来水浸洗1-2次
6．自来水或稀碳酸锂（100ml蒸馏水中加碳酸锂饱 和液1滴），涂片返蓝为止
7．依次置入70％→80％→95％酒精， 各2分钟
8．桔黄G6液，1分钟
9．95％酒精Ⅰ、Ⅱ缸，各1分钟
10．EA36液，5分钟
11．95％酒精Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ 各1分钟 12．无水酒精Ⅰ、Ⅱ，各1分钟 13．二甲苯Ⅰ、Ⅱ，各2分钟 14．中性树胶盖片封固
涂片制备 ?注意要点：
1.涂片动作要轻柔；
2.涂片要均匀，不易太厚或太薄； 3.涂片时要避免来回摩擦损坏细胞。
?适宜的涂片是涂片的细胞占玻片的2/3，在镜下每个视野内都布满细胞，间隙很小。 涂片固定 ?1.湿固定法:
即趁标本新鲜而湿润时即投入固定液内，这种标本染色后，染色鲜艳，结构清楚。 常用于痰液涂片、阴道涂片、宫颈涂片、穿刺涂片、食管拉网术涂片等。 ?2.干燥固定法：
即等待涂片自然或吹风机吹干后在固定。 ?固定液：95%酒精
?固定时间：10--20分钟 ?染色方法：常规HE染色
第九章 大体标本制作有关知识 ?1.大体标本的收集
通过尸体解剖和活体组织（包括外科手术切除标本和活体组织穿刺标本〕检查时发现并收集。
?2.大体标本的取材： 越新鲜越好
3.大体标本的固定
?1〕固定的目的：
将受检组织尽快地侵入固定液内，使组织和细胞的固有成分迅速凝固，防治自溶和腐败，使其保持与生活状态有相似的结构，以利于切片和观察。
?2〕固定液的选择：
A.甲醛（Fomaldehyde〕，又称福尔马林，其浓度在4％，它是一种还原剂，极易挥发，散发出强烈的刺激性气体，使人流鼻涕、流眼泪，呼吸道有异物感。 B.95％酒精（乙醇〕，除具有固定组织的作用外，尚有脱水作用 3.大体标本的固定 ?固定要求：
1.固定后达到防腐的目的；
2.能长期保存组织原有的体积和特色；
3.标本自然颜色长期保存后再做组织切片也不影响染色效果
?一般用10%甲醛溶液固定，不易用有色的混合固定液。
2. 动物标本取材: ①动物致死法
麻醉法,空气栓塞法,断头法,击头法,股动脉放血法等,要求动作迅速,及时解剖,取材与固定 ②动物取材注意事项:
准备好锋利的刀剪,固定液,取材应新鲜,最好是心脏还在跳动时取材,并立即投入固定液.组织块厚度不超过3mm(应将组织上的血液,渗物,粘液粪便等用生理盐水冲洗干净,选好组织块的切面,切除不需要的部分,再固定),应尽可能维持组织原形,对神经肌肉皮肤组织,可将其两端固定在木板或硬纸板上,然后再固定.
用化学反应原理，在切片上滴加某种化学试剂，使之与组织或细胞中的生物化学物质结合，再用显色剂使之显色，达到定位、定性地显示组织或细胞中的某种物质成分，这种技术称为组织化学和细胞化学技术。其结果可用显微镜和电镜观察。结合定量病理学技术，还可对有关成分定量。
? 糖类 ? 脂类 ? 核酸 ? 酶类
? 胶原纤维 ? 弹力纤维 ? 神经纤维
? 细胞膜、核膜结构
概念：免疫组织化学技术是指利用已知的抗
体与组织中相应的抗原结合，并利用 显色剂在原位将抗原物质显示出来 原理：抗原＋抗体＋显色剂
特点：在组织中原位显示某种特异性抗原 常用显色剂种类：酶、金属粒子、同位素 生物素、化学显色剂（DAB） 结果观察：显微镜、透射电镜
抗 原 ← 组织中 +
抗 体 ← 试剂 ↓ 抗原抗体复合物 +
第二抗体 ← 标记有显色底物 ↓
显色反应 ← 显色剂 (DAB)