SDS-PAGE具体步骤

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(一)安装夹心式垂直版电泳槽 各部分依下顺序安装:

装上储槽和固定螺丝销钉,仰放在桌面上;

将长、短玻璃板分别插到硅胶框的凹形槽中。注意勿用手接触灌胶面,以保持玻璃清洁;

将已插好玻璃板的凝胶模平方在储槽上,短玻璃板应面对上储槽;

将下储槽的销孔对准已装好螺丝销钉的上储槽,双手以对角线的方式旋紧螺丝帽。竖直电泳槽,用细头长滴管吸取已熔化的1%琼脂(糖)溶液,封住长玻璃板下端与硅胶膜间的缝隙。加琼脂(糖)溶液时,应防止气泡进入。琼脂(糖)溶液用不连续体系电极缓冲液配制。

(二)配胶及凝胶板的配制 1、配胶

配胶应根据所测蛋白质相对分子质量范围选择适宜的分离胶浓度。

2、凝胶板的配制

分离胶的制备:

按表配制20mL10%的聚丙烯酰胺(PAA)溶液,混匀后用细长头滴管将凝胶液加至长、短玻璃板之间的缝隙内,约8cm高,用1mL注射器取少许蒸馏水,沿长玻璃板壁缓慢注入,约3~4mm高,以进行水封。30min后,凝胶与水封层间出现折射率不同的界线,则表示凝胶完全聚合。倾去水封层的蒸馏水,再用滤纸条吸去多余水分。 浓缩胶的制备:

按表配制10mL3%的PAA,混匀后用细长头滴管将浓缩胶加到已聚合的分离胶上方,直至距离玻璃板上缘约0.5cm处轻轻将样品槽模板插入浓缩胶内,约30min后凝胶聚合,再放置20~30min,使凝胶“老化”。小心拔去样品槽模板,将pH值为8.3的Tris-甘氨酸缓冲液倒入上、下储槽中,应没过短玻璃板0.5cm以上,即可准备加样。 (电极缓冲液即pH值为8.3的Tris-甘氨酸缓冲液,内含0.1%的SDS)

(三)样品的处理与加样 样品的处理:

称取0.5~1mg蛋白质加1mL样品溶解液处理,溶解后,在100摄氏度沸水浴中保

温3min,取出冷却后取样电泳。(如处理好的样品暂时不用,可放在-20摄氏度冰箱内保存,使用前在100摄氏度沸水中加热3min,以除去亚稳态聚合物。)

加样:

10~15uL(即

(加样体积要根据凝胶厚度及样品浓度灵活掌握,一般加样体积为

2~10ug蛋白);如样品较稀,加样体积可达100uL。如样品槽中有气泡,可用注射器针头跳出。)加样时,将微量注射器的针头穿过电极缓冲液深入加样槽内,应尽量接近底部,轻轻推动微量注射器,注意针头勿碰破凹形槽胶面。(由于样品溶解液中含有相对密度较大的蔗

糖或甘油,因此,样品溶液会自动沉降在凝胶表面而形成样品层。)

(四)电泳

(分离胶聚合后是否进行预电泳,这应根据需要而定。)

在电极槽中倒入pH值为8.3的Tris-HCl电极缓冲液(内含0.1%的SDS)即可进行电泳。在制备浓缩胶后,不能进行预电泳,因预电泳会破坏胶中的pH值环境,预电泳只能在分离胶聚合后进行,应采用分离胶缓冲液。预电泳后,将分离胶面冲洗干净,然后才能制备浓缩胶。电泳条件也不同于连续系统,开始时电流为10mA左右;待样品进入分离胶后,改为20~30mA;当燃料前沿距硅胶框底边1.5cm时,停止电泳,关闭电源。

(五)凝胶板的剥离与固定

电泳结束后,取下凝胶膜,卸下硅胶框,用镊子撬开短玻璃板,并切下凝胶板的一角作为加样标志。在两侧溴酚蓝染料区带中心,插入细铜丝作为前沿标记。将凝胶板放在大培养皿内,加入固定液,固定过夜。

(六)染色与脱色

将染色液倒入培养皿中,染色1h左右,用蒸馏水漂洗数次,再用脱色液脱色,直到蛋白质区带清晰,即可计算相对迁移率。

(七)绘制标准曲线

将大培养皿放在一张坐标纸上,量出溴酚蓝区带中心距加样端的的距离(cm)以及各蛋白质样品区带中心与加样端的距离(cm),按下式计算相对迁移率(mR):

相对迁移率=蛋白质样品区带中心与加样端的距离(cm)/溴酚蓝区带中心加样端的距离(cm);

Mr=K*10-bm;

lgMr=lgK – b*m=K1 – b*m

Mr为蛋白质的相对分子质量;K,K1为常数;b为斜率;m为迁移率。 (以标准蛋白质的相对迁移率为横坐标,标准蛋白质分子量为纵坐标,在半对数坐标纸上作图,可得一条标准曲线。)

试剂——

不连续体系有关试剂:

【100g/L的SDS溶液。称取5gSDS,加双蒸水至50mL,微热使其溶解,置于试剂瓶内,于4摄氏度下储存。SDS在低温下易析出晶体,使用前应微热使其完全溶解;

1%(体积分数)的TEMED溶液。量取1mL TEMED,加双蒸水稀释至100mL,置于棕色瓶内,于4摄氏度下储存;

100g/L的AP溶液。称取1g AP,加双蒸水溶解至10mL,最好临用前配制;

样品溶解液(内含2%的SDS、5%的巯基乙醇、40%的蔗糖、0.02%的溴酚蓝的0.01mol/LpH值为8.0的Tris-HCl缓冲液)。先配制0.05mol/LpH值为8.0的Tris-HCl缓冲液:称取0.6gTris,加入50mL双蒸水,再加入约3mL1mol/L的HCl溶液,调整pH值至8.0,最后用双蒸水定容至100mL;

样品溶解液的配置

按表添加各组分:

SDS 巯基乙醇 蔗糖 溴酚蓝 0.05mol/LTris-HCl总体积 缓冲液 200mg 0.5mL 4g 2mg 2mL 10mL 凝胶储液。a.30%的分离胶储液:称取30gAcr及0.8gBis,溶于双蒸水中,定容至100mL,过滤后置于棕色瓶内,于4摄氏度下储存;b.10%的浓缩胶储液:称取10gAcr及0.5gBis,溶于双蒸水中,最后定容至100mL,过滤后置于棕色瓶中,于4摄氏度下储存; 凝胶缓冲液。a.分离胶缓冲液(3.0mol/L pH值为8.9的Tris-HCl缓冲液):称取36.3gTris,加少许双蒸水使其溶解,再加1mol/L的HCl溶液约48mL,调整pH至8.9,最后用双蒸水定容至100mL,于4摄氏度下储存;b.浓缩胶缓冲液(0.5 mol/LpH值为6.7的Tris-HCl缓冲液):称取6.0gTris,加少许双蒸水使其溶解,再加1mol/L的HCl溶液约48mL,调整pH至6.7,最后用双蒸水定容至100mL,于4摄氏度下储存;

电极缓冲液(内含0.1%的SDS的pH值为8.3的Tris(0.05mol/L)-甘氨酸(0.384mol/L)缓冲液)。称取6.0gTris和28.8g甘氨酸,加入10mL 10%的SDS,再加蒸馏水使其溶解,最后定容至1000mL;

1%的琼脂(糖)溶液。称取1g琼脂(糖)于100mL电极缓冲液中,加热使其溶解,于4摄氏度下储存备用。】 固定液。取454mL 50%的甲醇和46mL冰乙酸,混合均匀;

染色液。称取0.125g考马斯亮蓝R250,加250mL上述固定液,过滤后备用; 脱色液。取75mL冰乙酸和50mL甲醇,加蒸馏水定容至1000mL。

仪器——

夹心式垂直版电泳槽,直流稳压电源(300~600V,50~100mA),刻度吸量管(1mL、5mL、10mL),烧杯(25、50、100mL),细长头滴灌,1mL注射器及6号长针头,微量注射器(10或50uL),水泵或油泵(?),真空干燥剂

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