分子实验中核算DNA提取常见问题及分析 联系客服

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RNaseA处理不彻底,请减少菌体用量或加入溶液P3之后室温放置一段时间。如果溶液P1已保存6个月以上,需在溶液P1中添加RNaseA。 3.混有基因组DNA

加入溶液P2和P3后应温和温匀,如果剧烈振荡,可能把基因组DNA剪切成碎片从而混杂在质粒中,如果加入溶液P2后过于粘稠,无法温和温匀,请减少菌体用量.细菌培养时间过长会导致细胞和DNA的降解,培养时间不要超过16小时。 4.P3溶液加入时间过长

P3溶液加入后,放置时间不要太长,否则有可能会产生小片段DNA污染。 5.含大量核酸酶的宿主菌

宿主菌含大量核酸酶,在质粒提取过程中降解质粒DNA,影响提取质粒DNA的完整性,最好选用不含核酸酶的大肠杆菌宿主菌,如DH5 a 和Top10。 6.质粒的二聚体和多聚体形式

质粒复制过程中形成的,与宿主菌相关,电泳可检测出多条条带,单酶切处理后可变成单一条带。 六、RNA降解 1.新鲜细胞:

如果试剂没有问题,外源性污染也可以排除的话,降解几乎都来自裂解液的用量不足。如果将裂解液直接加入培养血中裂解细胞的话,一定要使裂解液能覆盖住细胞。 2.新鲜组织:

某些富含内源核酸酶的样品(如肝脏,胸腺等),即使使用电动匀浆器匀浆也不能避免RNA的降解。更可靠的方法是:在液氮条件下将组织研碎,并且匀浆时使用更多裂解液。 3.冷冻样品:

样品取材后应立即置于液氮中速冻,然后移至-70℃冰箱保存。样品决不能未经液氮速冻而直接保存于-70℃冰箱中。冷冻样品,即使是冷冻细胞,如果不在液氮条件下研磨碎,而直接加入裂解液中匀浆,RNA也比新鲜样品更容易降解。样品在与裂解液充分接触前决不能出现融化,所以研磨用具必须预冷,在碾磨过程中要及时补充液氮。 4.外源RNA酶的污染:

试剂,器械及实验环境中的RNA酶进入实验系统。 5.内源RNA酶的污染:

抑制剂失效或者用量不够,实验样品过多;匀浆时温度过高。 七、OD 260 / OD 280 比值偏低 1.蛋白质污染:

确保不要吸入中间层及有机相。减少起始样品量,确保裂解完全、彻底。加入氮仿后首先要充分混匀,并且离心分层的离心力和时间要足够。如果所得RNA的OD 260 / OD 280比值偏低,则用氮仿重新抽提一次,再沉淀,溶解. 2.苯酚残留:

确保不要吸入中间层及有机相。加入氮仿后首先要充分混匀,并且离心分层的离心力和时间要足够。

3.多糖或多酚的残留:

一些特殊的组织和植物中,多糖、多酚含量较多,这些残留也会导致OD260/OD280比值偏低。因此,从这类材料中提取RNA时,需要注意多糖、多酚杂质的去除。 4.设备限制:

测定OD260及OD280数值时,要使OD260读数在0.1-0.5之间.此范围线性最好.用水稀释样品:测OD值时,对照及样品稀释液请使用10mM Tris,PH7.5。用水作为稀释液将导致比值偏低。